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賽多利斯BLI技術助力2021諾獎得主揭示“痛覺感知”

瀏覽次數:6101 發布日期:2021-10-5  來源:本站 本站原創,轉載請注明出處
2021諾貝爾獎得主教您用BLI技術感知痛覺
 
近日,David Julius和Ardem Patapoutian因發現溫度和觸覺感受器而被授予2021諾貝爾生理學或醫學獎。David Julius團隊在感覺神經纖維上發現了被熱、冷或化學刺激物激活的離子通道,提供了對熱感覺、疼痛和瘙癢過程的分子級洞察。離子通道是一類物質交換的膜蛋白,其中有一種TRPA1離子通道,又稱芥末受體(wasabi receptor,是特異表達于初級傳入神經元(感覺神經元)上的跨膜受體。記得第一次吃芥末的那種酸爽嗎?就是它的作用! 更關鍵的是TRPA1被認為是治療慢性疼痛和瘙癢的潛在靶點。
 
 
2019年David Julius課題組在Cell雜志發表題為A Cell-Penetrating Scorpion Toxin Enables Mode-Specific Modulation of TRPA1 and Pain的文章,找到了來自于澳大利亞黑石毒蝎毒液的一種特異高效的TRPA1激動劑,并揭示了其作用機理,這種激動劑是被稱之為“芥末受體毒素”(WaTx)的多肽。
 
激動劑WaTx的結合機理
脂質體融合實驗發現WaTx能夠深入細胞膜,與TRPA1的胞內段結合。那結合位點在哪里呢?NMR結構解析發現,TRPA1胞內段還真的有一個口袋可能結合WaTx(如圖1所示)。
 

1. TRPA1胞內段的可能與WaTx的口袋,其中P622是一個重要的口袋組成氨基酸位點
 
離子通道與拮抗劑/抑制劑(可能是一種毒素或者藥物)的相互作用是揭示其機理重要的一步,BLI(生物層干涉)技術是最直接的檢測兩者相互作用的方法,使用BLI技術檢測WaTxTRPA1的互作是必要的。
 

不過問題又來了,離子通道蛋白是一種膜蛋白,其表達純化一般很困難,即使能表達也只表達某一段(比如胞外段)。并且膜蛋白的緩沖液也是比較苛刻的,一不小心就全軍覆沒。如果能用膜提取物取代純化的蛋白做相互作用,就可以解決很多包括各種膜受體和離子通道的親和力檢測問題了。賽多利斯Octet®分子互作分析系統基于BLI技術,能夠檢測濃度很低的TRPA1粗提物。
 
使用Octet®檢測TRPA1粗提物
作者在用BLI檢測前,先算了一筆賬,如果細胞的濃度為2×106/mL,一個細胞上大概有1000個離子通道。那么阿伏伽德羅常數一除,這些細胞懸浮液的膜提取物中TRPA1的濃度約為 (2×106×1000×1000)/(6.02×1023) = 3.3×10−12,大概為pM級別。考慮到膜提取的損失,就定為1 pM吧。這些數字不是拍腦袋想出來的,是通過電生理方法驗證過的。即使在如此低的濃度下,只要親和力高,用Octet®也是可以檢測出來的。
作者用SA(鏈霉親和素)傳感器固化Biotin-GSGS-WaTx,然后與表達人TRPA1細胞的膜提取物(總蛋白濃度為0.5 mg/mL)結合解離,結果如圖2所示:
 

2. TRPA1可以與WaTx反應,而P622A不反應,驗證了結構學解析的結果(Octet® RED384)。
 
如果設定TRPA1的濃度為1 pM,KD值為0.33 pM。可見,親和力是非常高的,說明WaTx可以和TRPA1在體外發生直接而牢固的相互作用。
 
動物實驗證明了WaTx導致了因受體活化而引起的鈣離子通透性降低,從而抑制了神經多肽CGRP的釋放,也因此阻斷了神經炎癥的發生。
 
這位諾貝爾獎獲得者為什么會使用Octet®呢?
  • 非標記Direct binding是趨勢,它的結果更準確
  • 快速測定親和力,更好地對互作進行定量表征
  • 使用浸入即讀的檢測模式,相對于傳統儀器,不受微流路限制,對粗樣品耐受性高,本文就是膜提取粗樣品
  • 列入《美國藥典》的分子互作分析方法,文章多,認可度廣
  • 使用方便,成本相對低
 
當然2020年兩位諾貝爾獎獲得者也用到了Octet®,請看下面鏈接。
告別EMSA,試試CRISPR女神用的核酸互作神器
諾獎獲得者教你做分子互作競爭實驗

參考文獻
A Cell-Penetrating Scorpion Toxin Enables Mode-Specific Modulation of TRPA1 and Pain . Cell2019
相關公司:德國賽多利斯集團
聯系電話:實驗室產品與服務事業部:400 920 9889 / 生物工藝解決方案事業部:400 680 1870
E-mail:info.cn@sartorius.com


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