近年來，生物學領域襲來一股“外泌體”研究熱潮。從細胞的排泄“廢物”到全球學者研究的“珍寶”，完成最強逆襲，一躍成為當下最炙熱的關鍵詞。隨處可見的以外泌體為關鍵詞的高分文章和相關產品，覆蓋各大領域，同時具有非常不錯的發展前景，得到國家各類科研基金以及市場資本的支持。

“外泌體”——最新動態

• 【Mol Cancer】腫瘤相關的外泌體通過多種機制促進肺癌轉移。2021.09.13

• 【Gastroenterology】產腸毒素的脆弱類桿菌通過抑制外泌體包裝的miR-149-3p促進腸道炎癥和惡性腫瘤。2021.08.06

• 【Protein Cell】來自鹿茸干細胞的外泌體減輕間充質干細胞衰老和骨關節炎。2021.08.03

• 【中科院】一種用于外泌體納米孔化的高通量納米流體裝置，用于開發載物的細胞囊泡。2021.07.21

• 【蘇州大學】基于一種微創外泌體噴霧產品修復心肌梗塞。2021.06.21

• 【JEV】基于細胞外囊泡的液體活檢生物標志物鑒定的最新方法。2021.05.12

• 【廣東省醫學科學院】干擾素刺激產生的外泌體hACE2通過競爭性阻斷可有效抑制新冠病毒的復制。2021.05.12

• 【JEV】一種來源于人誘導多能干細胞EV的分離培養方法。2021.04.10

• 【Gut】外泌體遞送的CD44v6/C1QBP復合物通過促進肝纖維化微環境來促進胰腺癌肝轉移。2021.04.07

• 【SCI子刊】新生兒臍帶間充質干細胞來源的外泌體通過沉積PCNA可逆轉骨髓間充質干細胞的衰老。2021.01.27

 

 

“外泌體”提取的方法

作為新興研究領域，外泌體研究的技術方法從最初的不完善，正在走向標準化。國際細胞外囊泡學會（ISEV）分別在2014年和2018年發表了EVs的研究方法和質控標準。但EVs的分離和純化是EVs相關基礎研究和臨床應用的瓶頸問題之一，國內外學者也在嘗試不同分離與富集方法。不同研究目的對EVs的純度要求不同，也就面臨不同方法的選擇，下面就幾種常用的EVs分離與富集方法進行詳細介紹。

超速離心法
 

超速離心法（Ultracentrifugation，UC）可以通過顆粒大小和密度兩個不同的維度，單獨或組合使用差速離心或密度梯度離心的方法來分離和富集EVs。根據全世界范圍內的ISEV調查，差速超速離心法是最廣泛使用的EVs分離純化方法，被視為EVs提取的“金標準”。盡管可以通過差速或密度梯度離心來減少雜質污染，但工作量較大，需要專門離心設備等，在未來外泌體的診斷和治療領域中不會作為首選的分離方法。

 

 

超濾法
 

超濾法（Ultrafiltration，UF）是一種相對快速和直接的技術。超濾特別適用于濃縮已通過其它方法分離的EVs，也可以用作主要的EVs分離/濃縮技術。超濾法使用的膜通常由纖維素、聚砜等材質制成，截留分子量為10-1000 kD。而超濾的一種高級形式就是切向流過濾（TFF），區別于傳統的死端過濾。TFF是指液體流動方向與過濾方向垂直的過濾形式，切向流不斷清洗沖刷膜表面，防止堆積，保持膜表面的清潔和持續工作。基于TFF的過濾原理和EVs的顆粒分布，切向流超濾（TFU）是目前快速分離EVs的主要方法之一。但TFU過程中膜容易堵塞，從而造成EVs的損失，該方法更適合從大體積樣本中富集EVs。

 

圖1 a）死端過濾；b）切向流過濾

尺寸排阻色譜法
 

尺寸排阻色譜法（Size-exclusion chromatography，SEC）是一種將溶液中的分子按照尺寸大小或者在某些情況下按照其分子量大小進行分離的色譜方法。SEC已經用于多種生物樣本中EVs的分離制備，可單獨使用或與其它分離方法搭配使用。研究表明，用SEC進行EVs分離，并與基于聚乙二醇（PEG）的EVs富集方法相結合，具有很好的重復性。目前市場上基于該原理的純化管柱參差不齊，也給廣大客戶帶來不同的選擇和不同的實驗結果。

 

圖2 尺寸排阻色譜法原理示意圖

沉淀法
 

沉淀技術在半個世紀前就應用于富集和提純病毒顆粒，而EVs和病毒顆粒有相近的生物理化特性，根據溶解度將EVs與其它化合物分離。最常用的親水多聚物沉淀法是PEG沉淀法，PEG親水性強，有較廣范圍的分子量，優良的適應性和富集功能使其成為目前商品化EVs富集試劑開發的熱點。

 

免疫親和分離法
 

EVs的膜表面存在大量的標志物，利用免疫學中的抗原抗體作用及受體和配體之間的特異性反應，可將EVs有效地分離。目前基于免疫親和性原理的EVs富集方法主要有免疫磁珠法和微流控技術。其中免疫磁珠法主要利用EVs膜上常見標志物（例如CD9、CD63、CD81等）以及其它腫瘤相關標志物等來特異性捕獲與富集。微流控技術已經實現了對EVs的選擇性分離純化，基于EVs的物理和生物化學性質的微尺度分離。與其他方法相比，基于免疫親和原理捕獲的EVs純度更高，利于自動化應用。

 

“組合”的方法成為趨勢

荷蘭學者通過收集近兩年共計700篇論文中描述的所有892種不同EVs分離方法，包括單一和組合的分離方法，分別對不同來源樣本進行統計分析。文章結果顯示：約60%為組合的方法分離EVs，其中細胞上清和血清或血漿都存在6種以上的EVs組合分離方法。另外組合的方法在EVs產量和純度方面整體上優于單一方法。該文分析，無論起始的樣本的類型如何，組合方法分離EVs都顯示了明顯的優勢。但不同研究目的也會催生研究人員選擇不同的分離方法，已有報道稱SEC與一種離心的方法相結合可以有效地從血清或血漿的樣本中去除脂蛋白等雜質。且該文作者建議將SEC包括在EVs分離方法中，可提高EVs的純度，同時會提高產量。

 

圖3 不同生物樣本單一和組合分離方法統計（左圖）；不同分離方法獲得EVs的產量和純度統計（右圖）

 

備注：CCS：細胞培養上清液，LSC：低速離心法，PK：蛋白酶K處理，TEI：總外泌體提取試劑盒，PEX：外泌體純化試劑盒， EQ：Exoquick沉淀法，IBMF：免疫微流控技術，EP：Exoprep沉淀法，EXE：exoEASY外泌體提取試劑盒。

 

每一年都有很多EVs相關的研究報道，包括基礎功能研究、臨床診斷或疾病治療等，但沒有對EVs分離方法進行評估，不同分離方法可能會導致實驗結果不可重復或EVs質量差等。總之，沒有單一的EVs分離方法適合所有EVs的研究目的，組合的EVs分離方法逐漸成為一種趨勢。正確捕獲高質量的EVs，提高實驗研究的準確性和可靠性。

 

英國Cell Guidance品牌的Exo-spin™外泌體純化試劑盒，采用“沉淀法+SEC”組合的方法，可進行外泌體的分離和濃縮，不同產品配置組合可適合不同的樣本類型，從而實現外泌體的高特異性和高回收率。

 

參考文獻

 

• Stam J, Bartel S, Bischoff R, et al. Isolation of extracellular vesicles with combined enrichment methods. J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci. 2021, 1169: 122604.

• Lobb R, Möller A. Size Exclusion Chromatography: A Simple and Reliable Method for Exosome Purification. Methods Mol Biol. 2017, 1660:105-110.