ELISA試劑盒不同實驗樣本類型處理方法
常規用于ELISA實驗的樣本包含血清、血漿、細胞培養上清、尿液以及組織勻漿等。不同樣本類型的預處理方法存在差異，合適的樣本預處理是確保ELISA實驗正確性和準確性的第一步。下面將介紹幾種不同樣本類型的處理方法。
1. 血清
血清是ELISA實驗最常用的樣本，其預處理也十分簡單。
使用無熱原無內毒素的試管或離心管采集血液樣本，將試管或離心管在室溫下放置2小時或4℃過夜，分離出血清（建議傾斜試管或離心管以擴大液面的橫截面，使血清可以更大程度地分離出來）。2-8℃下以1000×g離心20分鐘，小心收集上清液（血清），立即進行測定。建議在-20℃或-80℃下將收集的血清分裝保存，避免反復凍融。
在收集血液樣本的過程中應避免溶血，因為紅細胞在溶解時會釋放具有過氧化物酶活性的物質，這種情況下，ELISA實驗中將會出現非特異性顯色反應，導致檢測結果不準確。另外，樣本還應避免細菌污染，因為細菌可能含有內源性HRP，也會導致檢測結果不準確。
2. 血漿
使用含抗凝劑的采血管或離心管采集血液樣本，采集后30分鐘內，2-8℃下以1000×g離心15分鐘，小心收集上清液（血漿）。建議在-20℃或-80℃下將收集的血漿分裝保存，避免反復凍融。樣本應避免溶血或高血脂。常見的抗凝劑包括EDTA鈉鹽，肝素鈉，枸櫞酸鈉等。檢測前請仔細閱讀ELISA試劑盒說明書，查看該試劑盒針對抗凝劑是否有特殊要求。
3. 細胞培養上清
將細胞培養上清液吸入離心管中，在2-8℃下以1000×g離心20分鐘，除去細胞碎片和雜質，收集上清液備用，樣本保存在-20℃或-80℃，避免反復凍融。
4. 細胞提取液
反復凍融方法
1） 吸出培養板中的培養基，用胰蛋白酶消化細胞，然后加入適量的培養基將培養板上的細胞沖洗干凈。懸浮細胞可以省略該步驟。
2） 將細胞懸浮液收集到離心管中，在2-8℃下以1000×g離心5分鐘，然后吸去培養基，用預冷PBS洗滌細胞3次。
3） 加入適量的預冷PBS（建議在使用前立即加入蛋白酶抑制劑）重懸細胞。在6孔培養板（約1×106個細胞）中，每個孔加入150-250μL的PBS來重懸細胞。
4） 使樣本在-20℃或-80℃條件和室溫條件下反復凍融，重復凍融過程數次，直至細胞完全裂解。也可以使用超聲波細胞破碎器超聲處理懸浮液來裂解細胞。
5） 2-8℃下以1500×g離心10分鐘，去除細胞碎片，收集上清液，-20℃或-80℃保存，避免反復凍融。
5. 組織勻漿
1） 用預冷的PBS（0.01M，PH7.4）沖洗組織以除去表面殘留的血液或雜質（勻漿中裂解的紅細胞會影響測量結果）。
2） 將組織塊稱重，然后切成盡可能小的碎塊，以便充分勻漿。
3） 加入適量的預冷PBS（一般按1:9的重量體積比，比如1g的組織樣品對應9mL的PBS，具體體積可根據實驗需要適當調整，并做好記錄。推薦在PBS中加入蛋白酶抑制劑），用玻璃勻漿器在冰上或冰浴中充分勻漿。為了進一步裂解組織細胞，可以對勻漿液進行超聲破碎，或反復凍融。
4） 將勻漿液吸入離心管中，2-8℃下以5000×g離心5分鐘，收集上清液，保存至-20℃或-80℃，避免反復凍融。
6. 唾液
在2-8℃下，4000×g離心10分鐘以去除雜質，取上清即可檢測。建議使用新鮮的唾液樣本檢測。
7. 尿液
使用無菌容器收集尿液樣本。在2-8℃下，1000×g離心15分鐘以去除雜質，取上清即可檢測。
8. 糞便
將糞便樣本用PBS(0.01M, pH=7.4)重懸,置于冰上振蕩15分鐘,然后在2-8℃，5000×g離心5分鐘，取上清即可檢測。
9. 其他生物體液
1. 血清
血清是ELISA實驗最常用的樣本，其預處理也十分簡單。
使用無熱原無內毒素的試管或離心管采集血液樣本，將試管或離心管在室溫下放置2小時或4℃過夜，分離出血清（建議傾斜試管或離心管以擴大液面的橫截面，使血清可以更大程度地分離出來）。2-8℃下以1000×g離心20分鐘，小心收集上清液（血清），立即進行測定。建議在-20℃或-80℃下將收集的血清分裝保存，避免反復凍融。
在收集血液樣本的過程中應避免溶血，因為紅細胞在溶解時會釋放具有過氧化物酶活性的物質，這種情況下，ELISA實驗中將會出現非特異性顯色反應，導致檢測結果不準確。另外，樣本還應避免細菌污染，因為細菌可能含有內源性HRP，也會導致檢測結果不準確。
2. 血漿
使用含抗凝劑的采血管或離心管采集血液樣本，采集后30分鐘內，2-8℃下以1000×g離心15分鐘，小心收集上清液（血漿）。建議在-20℃或-80℃下將收集的血漿分裝保存，避免反復凍融。樣本應避免溶血或高血脂。常見的抗凝劑包括EDTA鈉鹽，肝素鈉，枸櫞酸鈉等。檢測前請仔細閱讀ELISA試劑盒說明書，查看該試劑盒針對抗凝劑是否有特殊要求。
3. 細胞培養上清
將細胞培養上清液吸入離心管中，在2-8℃下以1000×g離心20分鐘，除去細胞碎片和雜質，收集上清液備用，樣本保存在-20℃或-80℃，避免反復凍融。
4. 細胞提取液
反復凍融方法
1） 吸出培養板中的培養基，用胰蛋白酶消化細胞，然后加入適量的培養基將培養板上的細胞沖洗干凈。懸浮細胞可以省略該步驟。
2） 將細胞懸浮液收集到離心管中，在2-8℃下以1000×g離心5分鐘，然后吸去培養基，用預冷PBS洗滌細胞3次。
3） 加入適量的預冷PBS（建議在使用前立即加入蛋白酶抑制劑）重懸細胞。在6孔培養板（約1×106個細胞）中，每個孔加入150-250μL的PBS來重懸細胞。
4） 使樣本在-20℃或-80℃條件和室溫條件下反復凍融，重復凍融過程數次，直至細胞完全裂解。也可以使用超聲波細胞破碎器超聲處理懸浮液來裂解細胞。
5） 2-8℃下以1500×g離心10分鐘，去除細胞碎片，收集上清液，-20℃或-80℃保存，避免反復凍融。
5. 組織勻漿
1） 用預冷的PBS（0.01M，PH7.4）沖洗組織以除去表面殘留的血液或雜質（勻漿中裂解的紅細胞會影響測量結果）。
2） 將組織塊稱重，然后切成盡可能小的碎塊，以便充分勻漿。
3） 加入適量的預冷PBS（一般按1:9的重量體積比，比如1g的組織樣品對應9mL的PBS，具體體積可根據實驗需要適當調整，并做好記錄。推薦在PBS中加入蛋白酶抑制劑），用玻璃勻漿器在冰上或冰浴中充分勻漿。為了進一步裂解組織細胞，可以對勻漿液進行超聲破碎，或反復凍融。
4） 將勻漿液吸入離心管中，2-8℃下以5000×g離心5分鐘，收集上清液，保存至-20℃或-80℃，避免反復凍融。
6. 唾液
在2-8℃下，4000×g離心10分鐘以去除雜質，取上清即可檢測。建議使用新鮮的唾液樣本檢測。
7. 尿液
使用無菌容器收集尿液樣本。在2-8℃下，1000×g離心15分鐘以去除雜質，取上清即可檢測。
8. 糞便
將糞便樣本用PBS(0.01M, pH=7.4)重懸,置于冰上振蕩15分鐘,然后在2-8℃，5000×g離心5分鐘，取上清即可檢測。
9. 其他生物體液
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