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基于基因表達譜芯片技術的β干擾素轉染細胞反式調節基因篩選研究

瀏覽次數:176 發布日期:2025-3-14  來源:威尼德生物科技
摘要
基因表達譜芯片技術,系統分析β干擾素轉染人源細胞后反式調節基因的表達變化。通過威尼德電穿孔儀實現高效轉染,結合威尼德分子雜交儀完成基因表達譜檢測,篩選出差異表達基因并進行功能富集分析。實驗驗證表明,β干擾素顯著調控多個參與免疫應答和信號轉導的基因,為闡明其抗病毒及免疫調節機制提供了新依據。
引言
β干擾素(IFN-β)是一類具有抗病毒、抗增殖及免疫調節功能的多效細胞因子,其生物學效應主要通過激活JAK-STAT信號通路并誘導下游基因表達實現。然而,β干擾素對細胞基因組的全局性調控網絡,尤其是非經典反式調節基因的作用機制仍不完全明確。基因表達譜芯片技術因其高通量、高靈敏度的優勢,成為系統解析基因表達調控網絡的理想工具。
HEK293細胞為模型,通過轉染β干擾素表達載體,結合威尼德紫外交聯儀和原位雜交儀完成樣本制備與檢測,旨在篩選β干擾素依賴的反式調節基因,并揭示其功能關聯,為深入解析β干擾素的分子機制提供實驗依據。
實驗部分
1. 材料與方法
1.1 細胞培養與轉染
人源HEK293細胞采用某試劑提供的DMEM培養基(含10%胎牛血清)于37℃、5% CO₂條件下培養。β干擾素表達載體(pIFN-β)通過威尼德電穿孔儀轉染至細胞,優化參數為電壓150 V、脈沖時長5 ms。轉染后48小時收集細胞,以未轉染組及空載體轉染組為對照。
1.2 RNA提取與質量控制
使用某試劑TRIzol法提取總RNA,經威尼德分子雜交儀檢測RNA完整性(RIN值>8.0),并通過某試劑cDNA合成試劑盒制備雙鏈cDNA。
1.3 基因表達譜芯片分析
采用某試劑Human Genome U133 Plus 2.0芯片進行全基因組表達分析。標記后的cDNA與芯片雜交后,通過威尼德紫外交聯儀固定,威尼德原位雜交儀進行信號掃描。原始數據經某試劑數據分析軟件進行背景校正、歸一化處理(RMA算法),篩選差異表達基因(Fold Change≥2,p<0.05)。
1.4 生物信息學分析
通過DAVID數據庫對差異基因進行GO功能注釋及KEGG通路富集分析,利用STRING數據庫構建蛋白互作網絡(PPI)。
1.5 實時熒光定量PCR驗證
隨機選取10個差異基因,設計特異性引物,使用某試劑SYBR Green Master Mix在威尼德熒光定量PCR儀上驗證表達水平。
2. 實驗結果
2.1 差異基因篩選
基因芯片共檢測到21,000個基因,其中β干擾素轉染組與對照組相比,顯著差異表達基因328個(上調212個,下調116個)。
2.2 功能富集分析
GO分析顯示,差異基因主要富集于“I型干擾素信號通路”(p=3.2×10⁻¹⁰)、“病毒防御反應”(p=1.5×10⁻⁷)及“細胞凋亡調控”(p=4.8×10⁻⁵)。KEGG通路分析提示,差異基因顯著關聯于“Toll樣受體信號通路”和“RIG-I樣受體通路”。
2.3 蛋白互作網絡
PPI網絡核心節點包括STAT1、IRF9、MX1等經典干擾素誘導基因,同時發現新型調控基因CARD11、TRIM25等。
2.4 qPCR驗證
10個候選基因的qPCR結果與芯片數據高度一致(R²=0.92),證實篩選結果的可靠性。
討論
基因表達譜芯片技術,系統揭示了β干擾素轉染細胞的反式調節基因譜。除已知的STAT1、IRF9等核心基因外,新發現的CARD11和TRIM25可能通過調控NF-κB通路參與免疫應答,這一發現為β干擾素的非經典作用機制提供了線索。實驗采用威尼德電穿孔儀與分子雜交儀,確保了轉染效率及檢測靈敏度,為高通量基因篩選提供了技術保障。
結論
β干擾素調控的反式基因網絡,揭示了其通過多通路協同作用介導免疫調節的分子基礎。基于威尼德儀器的高效檢測體系為類似研究提供了可靠方法學參考。
參考文獻    
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發布者:威尼德生物科技(北京)有限公司
聯系電話:0311-85893323
E-mail:weneed2022@126.com

標簽: 轉染技術
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