細胞培養常見問題及可能原因的建議解決方案

• 培養基pH值變化迅速

1. 培養箱CO2分壓設置錯誤---根據培養基中NaHCO3的濃度增大或降低培養箱CO2的分壓，NaHCO3濃度為2.0-3.7g/L時，應相應地使用5%-10%的CO2分壓
2. 細胞培養瓶瓶蓋過緊---將瓶蓋旋松1/4圈
3. 碳酸氫鹽緩存系統緩沖能力不足---加入HEPES緩沖液，使其終濃度為10-25mM
4. 培養基中鹽含量不正確---CO2平衡環境中使用以Earle平衡鹽為基礎的培養基，大氣條件下使用以Hanks平衡鹽為基礎的培養基
5. 細菌、酵母或真菌污染---將細胞和培養基滅菌處理后丟棄

• 細胞無法在培養器皿上貼壁生長

1. 細胞胰酶消化過度---縮短胰酶消化時間或減少胰酶用量
2. 支原體污染---隔離細胞，檢測是否感染支原體；清洗通風廚和培養箱，如細胞被污染，滅菌處理后丟棄
3. 培養基中無附著因子---如果使用的是無血清配方，應確保含有附著因子或者使用經過包被的培養板

• 懸浮細胞聚集成團

1. 存在鈣離子和鎂離子---用不含鈣離子和鎂離子的平衡鹽溶液清洗細胞，輕輕吹打細胞，使其形成單細胞懸液
2. 支原體污染---隔離細胞，檢測是否感染支原體；清洗通風廚和培養箱，如細胞被污染，滅菌處理后丟棄
3. 蛋白水解酶消化過度導致細胞裂解、DNA釋放  用0.001%DNA酶I處理細胞；用PBS沖洗后再接種到新培養基中

• 細胞生長緩慢

1. 培養基或血清改變---比較不同培養基配方中葡萄糖、氨基酸及其他成分有無差異；通過生長實驗比較新老批次血清有無差異；增大細胞初始接種密度；使細胞逐步適應新的培養基
2. 必需生長促進成分（如L-谷氨酰胺或生長因子）耗竭、缺乏或分解---去除原培養基，加入新鮮培養基；向培養基中添加生長促進成分（如L-谷氨酰胺）
3. 輕度細菌或真菌污染---在不添加抗生素的條件下進行培養，如細胞被污染，滅菌處理后丟棄
4. 時間存儲不當---血清應于-5℃至-20℃下儲存；培養基應于2℃~8℃下避光儲存；盡量減少血清和培養基見光時間
5. 細胞初始接種密度低---增大活細胞接種密度
6. 細胞衰老、老化---將老化細胞丟棄，取用代數較少的細胞
7. 支原體污染---隔離細胞，檢測是否感染支原體；清洗通風廚和培養箱，如細胞被污染，滅菌處理后丟棄

• 細胞死亡

1. 培養箱中無CO2---監測培養箱中CO2使用速度以便確定及時更換氣瓶；經常檢測管路連接處是否漏氣；不要頻繁開啟培養箱門
2. 培養箱內溫度有波動---監測培養箱內溫度，及時校正
3. 使用抗生素達到毒性濃度---減少抗生素的用量；使用無血清培養基時，抗生素濃度應降低至1/10
4. 細胞復蘇或凍存時受到損傷---取用新的細胞
5. 培養基的滲透壓不合適---檢查完全培養基的滲透壓。大多數哺乳動物細胞可耐受260-350mOsm/kg的滲透壓，加入某些試劑和藥物后會影響培養基的滲透壓；昆蟲細胞培養基的滲透壓（340~380mOsm/kg）要高于哺乳動物細胞
6. 培養基中毒性代謝產物蓄積---去除原培養基，換用新鮮培養基