可用于ELISA實驗的樣本一般有血清、血漿、尿液、細胞培養上清以及組織勻漿等。不同樣本類型的預處理方法也不同。適當的樣本預處理是確保ELISA實驗正確性和準確性的第一步。這里，我們將介紹幾種不同樣本類型的處理方法。

1. 血清

血清是ELISA實驗最常用的樣本，其預處理也十分簡單。

使用無熱原無內毒素的試管或離心管采集血液樣本，將試管或離心管在室溫下放置2小時或4℃過夜，分離出血清（建議傾斜試管或離心管以擴大液面的橫截面，使血清可以更大程度地分離出來）。4℃下以1000×g離心20分鐘，小心收集上清液（血清），立即進行測定。建議在-20℃或-80℃下將收集的血清分裝保存，避免反復凍融。

在收集血液樣本的過程中應避免溶血，因為紅細胞在溶解時會釋放具有過氧化物酶活性的物質，這種情況下，ELISA實驗中將會出現非特異性顯色反應，導致檢測結果不準確，出現假陽性結果。另外，樣本還應避免細菌污染，因為細菌可能含有內源性HRP，也會導致檢測結果不準確。

2. 血漿

使用含抗凝劑的采血管或離心管采集血液樣本，采集后30分鐘內，4℃下以1000×g離心15分鐘，小心收集上清液（血漿）。建議在-20℃或-80℃下將收集的血漿分裝保存，避免反復凍融。樣本應避免溶血或高血脂。常見的抗凝劑包括EDTA，肝素鈉，枸櫞酸鈉等。檢測前請仔細閱讀ELISA試劑盒說明書，查看該試劑盒針對抗凝劑是否有特殊要求。

3. 細胞培養上清

將細胞培養上清液吸入離心管中并以1000×g離心20分鐘，除去細胞碎片和雜質，收集上清液備用，樣本保存在-20℃或-80℃，避免反復凍融。

4. 細胞

反復凍融方法

1） 吸出培養板中的培養基，用胰蛋白酶消化細胞，然后加入適量的培養基將培養板上的細胞沖洗干凈。懸浮細胞可以省略該步驟。

2） 將細胞懸浮液收集到離心管中，以1000×g離心10分鐘，然后吸去培養基，用預冷PBS洗滌細胞3次。

3） 加入適量的預冷PBS（建議在使用前立即加入蛋白酶抑制劑）重懸細胞。在6孔培養板中，每個孔需要150-250μL的PBS來重懸細胞。

4） 使樣本在-20℃或-80℃條件和室溫條件下反復凍融，重復凍融過程數次，直至細胞完全裂解。也可以使用超聲波細胞破碎器超聲處理懸浮液來裂解細胞。

5） 4℃下以10,000×g離心10分鐘，去除細胞碎片，收集上清液， -20℃或-80℃保存，避免反復凍融。

5. 組織勻漿

1） 用預冷的PBS（0.01M，PH7.4）沖洗組織以除去表面殘留的血液或雜質。

2） 將組織塊稱重，然后切成盡可能小的碎塊，以便充分勻漿。

3） 加入適量的預冷PBS（體積取決于組織的重量，9 mL PBS適用于1 g組織，建議使用前立即在PBS中加入適量蛋白酶抑制劑），用玻璃勻漿器在冰上或冰浴中充分勻漿。

4） 將勻漿液吸入離心管中，4℃ 下以5000×g離心5~10分鐘，收集上清液，保存至-20℃或-80℃，避免反復凍融。

6. 尿液、唾液及其他生物體液

以1000×g離心20分鐘，收集上清液，立即進行測定。

    一般來說，由于ELISA實驗只能檢測可溶性蛋白質的含量，因此要求樣本應清晰透明并離心除去沉淀物或懸浮物質。為確保實驗的準確性， -20℃或-80℃保存的樣本應在1-6個月內完成檢測，4℃保存的樣本在一周內完成檢測。此外，樣本中不能含有會抑制HRP活性的NaN3，否則會造成假陰性結果。