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全基因組甲基化定量檢測技術-LUMA

瀏覽次數:4324 發布日期:2018-11-20  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負
全基因甲基化定量技術—LUMA
 
 
LUMA介紹
基因組DNA甲基化(Genomic DNA Methylation, GDM)的變化被認為是正常和病理細胞過程中的重要的事件,有助于正常發育和分化以及癌癥和其他疾病。在此,我們介紹一種新的方法評估全基因組DNA甲基化,稱為熒光甲基化檢測(Luminometric Methylation Assay,LUMA)。該方法采用甲基敏感限制性內切酶DNA裂解法聯合焦磷酸測序的聚合酶延伸分析。該方法是一種定量檢測技術,重現性高,易于推廣。
其優點是:無需亞硫酸鹽修飾,無需引物,無需PCR過程,測序反應無需磁珠等試劑,十分鐘左右即可完成測序反應,方便快捷。而且,該實驗只需要200-500 ng的基因組DNA,并包含一個內控以消除起始DNA數量不同的問題。整個實驗過程能夠在6個小時內完成。
 
技術原理
此方法由Karimiet等人于2006年建立,采用DNA甲基敏感或不敏感的限制性內切酶進行DNA裂解,隨后進行生物熒光聚合酶延伸試驗,以定量限制性裂解的程度。此實驗使用了對CpG甲基敏感的限制酶HpaII及其對甲基不敏感的同裂酶MspI做平行反應。EcoRI被用在所有反應中作為內參。
MspIHpaII酶切靶序列為CCGG,其CpG位點數量占整個基因組中CpG位點的8%,可以作為評估全基因組甲基化水平的一個標志物。MspI和HpaII裂解后形成5’CG粘末端,而EcoRI生產5′AATT粘末斷,然后通過聚合酶延伸逐步填充苷酸。隨著dNTP的成功延伸,無機焦磷酸(PPi)被釋放并通過ATP硫酸化酶和5’磷酰硫酸腺苷(APS)作用下轉化為ATP。隨后熒光素通過熒光素酶和ATP產生一定比例的可見光并由CCD檢測。
 
實驗步驟
1. 酶切:每例樣本分為2份DNA,分別用HpaII+EcoRI或MspI+EcoRI雙酶切,酶切約4hr。
2. 純化:酶切產物純化回收。
3. 焦磷酸測序(Pyrosequencing),反應過程如下:
dNTPs按四個步驟添加(步驟1:dATPαS,第二步:dGTP + dCTP,第三步:dTTP和步驟4:dGTP +dCTP)。峰值對應dATPαS(步驟1)和dTTP(步驟3)的添加,都代表EcoRI裂解,因此兩者應該是等值的。因此,dTTP峰用作dATPαS峰的質控。第2步,dCTP和dGTP一起添加,對應的峰值代表HpaII或MspI裂解。在步驟4中,再次添加dCTP和dGTP作為內控完成第二步,因此其相應的峰值應該是零或接近零。
 
 
 
甲基化率(%)計算:如下圖

 
甲基化率={1-[HpaII(C+G)/EcoRI(A)]/[MspI(C+G)/EcoR(A)]}×100, 上圖中樣本甲基化GDM=57.12%
 
 
技術應用及優化
LUMA法自Karimiet等人建立以后,已經到到廣泛應用,特別是最近幾年表觀遺傳學研究的深入,此法往往配合NGS、甲基化芯片等技術對實驗樣本進行不同層面的表觀遺傳檢測。在應用過程中,該方法也在不斷的被評估和改進。
  • Carolina Soriano-Ta´ rraga等提出此方法受DNA抽提方法的影響,同一樣品抽提方法 不同得到的甲基化率有差異。但對于同樣抽提方法的樣品來說還是有比較好的使用價值的。
  • Sofia Lisanti等提出EcoRI內切酶具有“star activity”效應,即非特異性切割(受Buffer濃度和切割時間影響)和切割不充分(對于EcoRI酶切位點GAATTC的甲基化影響酶切活性),所以作者提出使用與EcoRI有類似酶切位點的MunI替代。
  • Claudia Knothe等人使用MunI同裂酶MfeI作為內控,并且提出峰值計算新公式:即用A峰和T峰的平均值替代原公式中的EcoRI(A)。
 
參考文獻:
  • Mohsen Karimi, et al, LUMA (LUminometric Methylation Assay)—A high throughput  method to the analysis of genomic DNA methylation. EXPERIMENTAL CELL RESEARCH 312(2006)1989–1995
2. Carolina Soriano-Ta´rraga, et al, DNA Isolation Method Is a Source of Global DNA Methylation Variability Measured with LUMA.Experimental Analysis and a Systematic Review.PLOS ONE, April 2013,Volume 8,Issue 4,e60750
  • Sofia Lisanti,et al.Comparison of Methods for Quantification of Global DNA Methylation in Human Cells and Tissues. PLoS ONE 8(11): e79044. 
  • Claudia Knothe,et al.Disagreement between two common biomarkers of global DNA methylation. Clinical Epigenetics (2016) 8:60
  • Karilyn E. Sant,et al.DNA Methylation Screening and Analysis.  Methods Mol Biol. 2012 ; 889: 385–406.
  • Regan Vryer,et al.What’s in a name? Context-dependent significance of ‘global’ methylation measures in human health and disease.Clinical Epigenetics (2017) 9:2
  • Chowdhury et al.Technical advances in global DNA methylation analysis in human cancers. Journal of Biological Engineering (2017) 11:10
  • Li et al.Clinical implications of genome-wide DNA methylation studies in acute myeloid leukemia.  Journal of Hematology & Oncology (2017) 10:41
  • Florence K. Crary-Dooley,et al.A comparison of existing global DNA methylation assays to low-coverage whole-genome bisulfite sequencing for epidemiological studies. EPIGENETICS 2017, VOL. 12, NO. 3, 206–214
  • Nojima et al.Correlation between global methylation level of peripheral blood leukocytes and serum C reactive protein level modified by MTHFR polymorphism: a cross-sectional study. BMC Cancer (2018) 18:184
 
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